双链特异性直接消化cDNA削减试剂盒


产品编号 产品名称 产品规格 产品等级 产品价格
294-62001 DsDD cDNA Subtraction Kit Wako 5次用

DsDD cDNA Subtraction Kit (和光新推)双链特异性直接消化cDNA削减试剂盒

双链特异性直接消化cDNA削减试剂盒


  无需断片即可削减Tester cDNA。

  DsDD(Duplex-specific Direct Digestion) cDNA Subtraction Kit Wako是从cDNA库通过削减法配制Tester和Driver cDNA。利用Tester和cDNA混合形成组织非特异性表达的基因,再通过双链特异性DNA核酸酶-Duplex-specific nuclease分解杂交cDNA。分解后,用ExonucleaseⅠ分解去除残留Driver cDNA,从而实现在Tester cDNA中高效浓缩特异性表达的cDNA。

  本品用作解析癌细胞组织特异性功能和性质时,Tester cDNA从癌细胞组织、而Driver cDNA从正常细胞中提取,可浓缩来自癌细胞组织特异性表达的基因的cDNA 。DsDD cDNA Subtraction Kit 中的cDNA库 可作为起始材料,全部工序完成仅需2天,是划时代的技术。



◆特点


● 可从cDNA库制作

● Tester和Driver的优异选择性

● 采用Duplex-specific nuclease去除法

● 操作简单,作业工序仅需2天



试剂盒原理


双链特异性直接消化cDNA削减试剂盒

准备Tester cDNA库和Driver cDNA库。在Tester cDNA库中,cDNA插入方向要与载体一致。

1.扩增Tester cDNA

扩增DNA中在5’端添加磷酸引物使用。

2. λ 核酸外切酶处理

识别双链DNA 5’端磷酸化引物并从5’到3’开始降解。Tester没有杂交,削减效率加强。

3.限制性内切酶处理

消化两端的接头保证准确的杂交结果。

4.杂交

Tester cDNA和Driver cDNA在68℃中反应16-20小时(混合比率=1:200)。过量的Driver cDNA使大部分Tester cDNA形成单链DNA。

5.双链特异性核酸酶处理

酶特异性酶切单链DNA。高反应温度(68℃)保证反应的特异性。

6.核酸外切酶 I处理

酶特异性酶切单链DNA。非特异性基因为单链,然后被降解。反应后,Tester能特异性表达基因的单链DNA能保留。

此高效cDNA削减方法完成仅需2天。

使用案例


  利用人肝癌来源的HepG2细胞和人正常肝脏来源的cDNA库,对高表达管家基因-GAPDH和HepG2细胞中特异性表达的AFP基因进行削减。

 

双链特异性直接消化cDNA削减试剂盒

  在HepG2 cDNA和正常肝脏cDNA都能检测出GAPDH的条带,但Subtraction cDNA没有检测出条带。另外,正常肝脏组织cDNA没有检测出AFP条带,但在Subtraction cDNA中能检测到与HepF2 cDNA同等亮度的AFP条带。通过本方法得到的Subtraction cDNA能高效浓缩HepG2的特异性表达基因。

Q&A


Q:  DsDD cDNA Subtraction Kit做什么的试剂盒?

A: 将需要做比较的cDNA库用PCR进行扩增制备Tester和Driver cDNA,对DNA扩增产物进行削减的试剂盒。与传统方法相比,操作更简便,实验时间也仅需2天时间。可以将现有的cDNA库或市面售卖的cDNA库直接开始进行实验,这是传统方法所不能做到的。而且最终制备出来的Subtraction cDNA是混入管家基因较少的cDNA,可以直接应用于各种用途。

Q:  DsDD cDNA Subtraction Kit有什么优点?

A:● 直接使用现有的cDNA,全部工序完成仅需2天。

A:● 全程在DNA状态下进行,无需熟练的操作技术。cDNA的制备有非常高的选择性。

A:● 可以通过市面或用户自己准备的质粒cDNA来制备。

A:● 除了质粒以外,还可以从5’和3’端带接头的cDNA制备cDNA。

A:● 操作简便

A:● 最终制备出来的Subtraction cDNA反映最初所用的Tester cDNA。因为Tester没有经过限制性内切酶处理,所以一开始的Tester cDNA可以反映最终制备的Subtraction cDNA的状态。原理上,在载体库使用全长cDNA,就能反映Subtraction cDNA的全长。

● 只要改变Tester和Driver,就能进行反向削减。

● 制备的Subtraction cDNA可以立刻应用于各种用途。

● 制备的Subtraction cDNA中,混入管家基因的量少,所以它还可以作为载体亚克隆(系统序列)和DNA芯A: 片的探针使用。

Q:  与PCR-Select法有什么不同?

: 

起始材料

接头添加

杂交次数

house-keeping基因污染

DsDD法

cDNA库或5’和3’末端带接头的cDNA

不必要

1次

已经分解去除,

污染小

PCR-Select法

RNA

必要

2次

未经分解去除,

有污染的可能性

● PCR-Select法每次都需要通过RNA制备cDNA,DsDD法则只需cDNA库就能进行实验。另外,采用PCR-Select法必须用Rsal(4碱基内切酶)酶切,将低分子化的接头分子与3’或5’端结合。而DsDD不需要。因此最终的Subtraction cDNA能反映最初的Tester cDNA的状态。

● PCR-Select法需要进行两次杂交,而DsDD法只需一次。

● PCR-Select法需要从大量cDNA样品中用Supression-PCR对SubtactedcDNA进行特异性扩增,而DsDD法则是通过对与管家基因等共同表达的基因进行杂交后,用分解去除的方式,极力减少管家基因的污染。DsDD法的原理上是形成Subtraction cDNA群,因此可以直接应用于克隆和DNA芯片的制作。

Q:  操作DsDD法时,特别需要注意的事项是什么?

1.     使用Tester,运用单向插入的cDNA库。

Tester的cDNA库,必须对载体使用单向插入的cDNA库。若不用单向cDNA库,即使是用λ核酸外切酶处理成单链,有意链和反意链的cDNA会混为一体,Tester聚集杂交,是降低Subtraction效率的主要原因。

A:2.     使用去除低分子DNA的色谱柱

DSN(Duplex-specific nuclease)是8bp以上的完全一致的双链DNA分解酶,因此其短断片残留多。在乙醇沉淀中,无法去除这些断片或引物。引物残留的非特异性杂交,是DSN的非特异性分解的原因。DSN的分解产物在最后的PCR时,变成非特异性引物,是形成低分子断片等非特异性断片增加的原因。

A:3.     用乙醇共沉淀时,务必使用配套的Ethachinmate(乙醇沉淀核酸载体)

共沉淀时使用tRNA等核酸,会与Tester cDNA发生非特异性杂交。引起DSN的非特异性分解。

而Ethachinmate(乙醇沉淀核酸载体)是聚丙烯酰胺类的共沉淀剂,DNA回收率高达100%。即使通常不可见的沉淀也可以变为可见,在操作移液器时避免误吸。

A:4.     使用适用于1μl的移液器。

1μl的移液操作时,尽可能使用合适的吸移管操作(如Gilson公司的PIPETMAN 2P)。特别是在进行杂交时,Tester ssDNA和Driver dsDNA需要注意移液操作。这一操作中,Tester:Driver=1:200这一比率的把握尤为重要,尽可能减小在移液移过程中的误差。

A:5.     酶反应时使用PCR管。
说明书记载DNA扩增反应应尽可能使用PCR管。PCR热效率较好可以进行正确的反应。

Q:  除试剂盒外还需准备什么?

1.     Tester和Driver扩增用的cDNA库

A:2.     Tester和Driver扩增用的Primer

A:3.     参照基因扩增用Primer(GAPDH、β-Actin等)

A:4.     DNA聚合酶(TOPOTAQ DNA polymerase等)

A:5.     dNTP Mixture

A:6.     低分子DNA和Primer去除用色谱柱

A:7.     限定性酶

A:8.     苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)

A:9.     70%、99.5%乙醇

A:10.   DNA分子量marker

A:11.   琼脂糖

A:12.   溴化乙锭

A:13.   1×TAE Buffer

A:14.   Loading Buffer

A:15.   灭菌蒸馏水

Q:  DsDD是什么的缩写?

: DsDD是Duplex-specific Direct Digestion(双链特异性直接消化)的缩写。通过Duplex-specific DNA Nucelase,可以特异性切断杂交形成的DNA群。

Q:  Tester和Driver是什么?

: 特异性表达的cDNA端叫“Tester”,作为基准的cDNA一般称为“Driver”。从癌特异性cDNA库制备的cDNA为“Tester”,正常细胞来源的cDNA库配制的cDNA则为“Driver”。

Q:  应选用何种凝胶过滤柱?

: 可以使用能去除100bp以下的,市面售卖的凝胶过滤柱。Code No.:195-14451 Spin Cleaner

Q:  杂交一定要经过16小时么?

: 16~20小时都是没有问题的。建议16个小时是因为考虑到从实验当天17点开始进行杂交的话,第二天上午9点就可以进行下一项操作。

Q:  按照protocol制备Driver ds cDNA,但还是不能配出200ng/μl的浓度,应该如何解决?

: 浓度比较小的时候,请用乙醇共沉淀法操作。离心管中加入Tester 1ng、Driver 200ng后,加入无菌水100μL,Ethachinmate 1μL,3mol/L的Sodium Acetate 10μL,乙醇250μL,振荡混合后进行离心。然后去除上清,加入150μL 70%的乙醇离心后,去除上清,干燥,再加入3μL的灭菌蒸馏水进行溶解。备用于杂交试验。

杂交操作中Tester:Driver=1:200的比率十分重要。乙醇沉淀导致部分DNA缺失是没有问题的。

Q:  DSN (Duplex-specific nuclease)有什么优点?

: DSN是堪察加蟹肝脏来源的新型双链特异性DNA分解酶,可在双链DNA或DNA-RNA杂交过程中特异性切断DNA。最适宜温度55~65℃,Mg2+条件下,可用EDTA抑制其活性。因为DSN能在高温环境下进行反应,所以在DsDD法中,进行严格性较高的杂交反应。

Q:  一定要使用PCR管吗?

: 说明书记载DNA扩增反应应尽可能使用PCR管。热效率较好能进行正确的反应。

Q:  Drive ds cDNA的限定性酶处理是必要的么?

: Tester和Driver的载体相同时,需要进行限定性酶处理。目的是防止因Primer结合引起非特异性杂交而导致DSN分解。用限定性酶只剪切Tester和Driver的cDNA,相辅的cDNA杂交。通过改变Tester和Driver端的Primer set,进而减少非特异性杂交。

Q:  扩增的Tester和Driver侧的Primer set可以是相同的吗?

: 同一Set也可以,但不是酶处理本身100%的反应。未处理的Driver cDNA Primer和Tester sscDNA的Primer结合,会通过DSN被分解。为了防止上述情况,建议扩增Tester和Driver端的PrimerSet还是要区分开。

Q:  限定性酶处理时如果出现Driver cDNA的内部被切断的话,会有影响吗?

: 没有影响。即使被切断了,还是能与Tester sscDNA进行杂交。

Q:  一定要进行Exonuclease I处理吗?

: 不是必要的操作。对Subtraction cDNA使用标记探针时,Exonuclease I能分解Driver的cDNA,可降低背景。

Q:  最后,扩增削减cDNA用到的Primer需要进行磷酸化吗?

: 不用,而是需要合成新的Primer。可以的话,建议使用最初的Primer内侧区域的Primer进行PCR操作。

Q: 配制Tester cDNA和Driver cDNA时使用的plasmid DNA会有影响吗?

: 没有影响的。DsDD法用的是双链特异性DNA分解酶(DSN),可分解plasmid DNA,所以不会影响。像生物素结合法、乳胶微粒oligo(dT)固相法这些传统方法,无法去除plasmid DNA,才对转换和探针的制备等产生影响。

Q:  说明书推荐的TOPOTAQ DNA polymerase有什么特点?

: 本产品是Pyrococcus DNA polymerase和Taq DNA polymerase来源的催化结构域和甲烷细菌Methanopyruskandleri来源的非特异性DNA结合域融合的新型耐热性DNA Polymarase。本酶族带有拓朴异构酶活性。通过这个特性,仅通过酶反应就能扩增GC-rich领域。这是目前其他酶都无法轻易做到的。TOPOTAQ DNA polymerase有热启动功能,能抑制非特异性的扩增。

Q:  Ethachinmate是什么?

: Ethachinmate由NipponGene生产的,在核酸(DNA或RNA)被乙醇或异丙醇沉淀时使用的高分子载体。使用本品,能从浓度低的核酸溶液中定量回收微量核酸。加入乙醇或异丙醇后,无需行-20℃或-80℃冷却,可直接离心。回收的核酸用缓冲液溶解后,可直接作为各种酶的基质使用。

Q:  去除的Subtracted cDNA有多大?

: 和光确认的大小为500~1500bp。最初用的cDNA库和DNA扩增的的延伸时间会影响Subtracted cDNA的大小。

Q:  Subtraction的效率是多少?

: Tester端用肝癌细胞HepG2来源的cDNA,Driver端用人正常肝脏组织由来cDNA的话,Real-time PCR过程中GAPDH会被抑制至1/1,000。

Q:  对削减的基因进行亚克隆化,什么方法比较好?

: 一般采用的方法是:TA克隆或限定性酶处理后,插入目的载体,进行转换。

Q:  证明cDNA削减的方法是什么?

: 配制的Subtracted cDNA经过TA克隆后,在菌落PCR确认插入断片,接合探针,通过其在市面售卖的mRNA点膜上的斑点,判断是否有组织特异性基因存在的。还可以在数据库搜索序列,或解析DNA芯片的方法。